Western Blot雖是實驗室最常用的蛋白分析技術,但是由于它步驟繁瑣、操作流程長、影響因素多,所以,導致我們在做實驗時會遇到各式各樣的問題。今天我們總結了一些WB實驗中經常遇到的各種“奇葩”條帶問題,并為你推薦了常用的解決方法,希望對大家有所幫助。
一、目標條帶沒有信號
原因分析:
樣品中可能含有蛋白酶,使蛋白樣品分解成小分子。
解決方法: 添加蛋白酶抑制劑。
原因分析:
目標蛋白濃度過低(低于檢測下線)。
力
解決方法:
加大上樣量或提高目標蛋白濃度。
原因分析:
轉膜時間太短導致目標蛋白沒有充分轉移到膜上,或者轉膜時間過長導致樣品轉穿。
解決方法:
控制轉膜時間并選擇適合的轉印膜。
原因分析:
一抗的特異性不佳,導致一抗無法識別目標蛋白。
解決方法:
選用高品質抗體。
原因分析:
一抗反復使用后導致效價降低,盡管還能與目標蛋白連接,但連接蛋白的數量太 一抗不宜反復使用。
洗脫過渡導致與一抗相結合的目標蛋白被洗掉。
解決方法:
洗脫時間的時間和頻率應有效控制,一般建議3次10分鐘。
二. 圖片背景過高,難以分辨條帶
原因分析及 解決方法
一抗濃度太高,導致抗體非特異性結合。 降低一抗濃度。
洗膜的時間和次數不夠,導致其他蛋白沒有清洗干凈
提高洗脫時間和頻率。
封閉物用量不足。
提高封閉物濃度,孵育時保證封閉液完全浸沒轉印膜。
封閉物使用不當。 檢測生物素標記的蛋白時不可用脫脂奶粉封閉。
封閉時間不夠。 室溫37度封閉1小時以上,4度封閉過夜。
一抗稀釋度不適宜。 對抗體進行滴度測試,選擇最適宜的抗體稀釋度。
一抗孵育的溫度偏高。 建議4℃結合過夜。
三、 膜上出現黑點和黑斑
原因分析及解決方法
膜上其他部位與一 抗或二抗非特異性結合,配置的封閉液可能沒有完全溶解,使不容顆粒附著在膜上從而導致發光時候膜上形成黑點。
配置封閉液后最好靜止一下,封閉牛奶一定要純,封閉結束之前要清洗三遍之后再加一抗。
抗體與封閉試劑反應。
使用前過濾封閉試劑。
HRP偶聯二 抗中有聚集體。
過濾二抗試劑,去除聚集體。
四、出現非特異性條帶
原因分析 解決問題
一抗非特異性與蛋白結合,此種情況大多數情況是因為一抗特異性不好。
更換一抗。
目的蛋白有多個修飾位點,有些一抗還能結合其他蛋白的結合位點。
更換一抗品種。
蛋白樣品降解,蛋白酶將目標蛋白分解成若千個蛋白,而這些蛋白同樣可以被一抗識別。
添加蛋白酶抑制劑。
五、條帶中出現整條白色空斑
原因分析 解決問題
過高的蛋白上樣量或一抗和二抗濃度過高都會促使底物過快的消耗,導致我們在做化學發光檢測時,發光底物已經消耗殆盡而形成空斑。
減少蛋白上樣量、稀釋一抗和二抗的濃度。
六、條帶中出現白圈
原因分析 解決方法
轉膜時候,膜與膠之間有氣泡。
解決方法: 制作“三明治”時,注意趕走氣泡。通常將電轉液倒入一個盤子里,液體高度與第一層濾紙齊平,然后往濾紙上澆一些轉膜液,把電泳膠用清水清洗后平鋪在濾紙上,隨后在確認濾紙與膠之間無氣泡后,再往膠上澆一些電轉液,之后用雙手的拇指和食指輕輕夾住PVDF膜兩側中間,使膜成U型,再將U型底部接觸到膠的中間,慢慢往兩邊放下膜,這樣可以減少氣泡。上層濾紙同樣用U型的放置方法,可以用玻璃棒貼實一下,然后蓋上海綿墊。
七、條帶拖尾
原因分析 解決方法
這種情況很容易出現,因為導致條帶拖尾的原因很多,可能性較大的是一抗濃度太高,作用時間太長或。
根據情況調整蛋白量,同時降低一抗的濃度,縮短一抗的時間。
八、條帶變形
原因分析 解決問題
膠體中存在氣泡,或不溶性雜質,膠不均不平整。
配膠時用的小燒杯,水,SDS,tris等等干凈無雜質。貼邊角加入液體,凝固時避免大幅度動作觸碰。
九、條帶呈啞鈴裝
原因分析及 解決方法
出現啞鈴裝條帶的問題,最大的可能性就是膠沒有配置好,膠凝固后不均一。另外還有一種可能就是樣品中含有太多雜質,沒有離心下來,然后雜質沉淀在孔的中間,蛋白被擠到兩邊。
解決方法:把膠配好,不合格的膠堅決不能用。
十、最邊緣條帶彎曲
原因分析 解決方法
電泳電流不均一
解決方法:換電泳槽,或者不使用兩邊的孔。
十一、背景非均一性
原因分析及 解決方法
膜可能干過。
解決方法:在每一步的操作過程中,都需要注意不要讓膜干掉,確保蛋白面不要被風干很長時間,一定要用不漏水的封閉盒并蓋上蓋子,防止過夜16個小時液體流失。
十二、條帶呈“微笑”或“倒微笑"”狀
原因分析及解決問題
條帶呈“微笑U”狀,凝膠冷卻不均一,電泳槽老化。
解決方法: 更換電泳槽。
條帶呈“倒微笑∩”裝,凝膠左右兩頭沒有凝固好。
解決方法: 重新制膠。
十三、其他問題
原因分析及解決方法
蛋白分子量偏高或者偏低。
可能是膠的濃度與目的蛋白的濃度不對應,比如說100KD的蛋白你用12%的膠跑,或者說20KD的蛋白你用6%的膠跑。
蛋白質降解。
蛋白質降解后很可能會在比原來位置低的地方出現主帶,然后會出現一些其他帶,最主要特點是所有的條帶比正常的都低,并且條帶模糊不清晰。
所有條帶連成一片沒有間隔。
原因最可能是上樣量過多,其次是樣品彌散(比如電泳長時間停止樣品彌散)。
以上是我們對WB條帶出現各種狀況及解決方法的一個總結,希望可以對大家有所幫助。如果各種原因都試變了,還是做不好WB實驗怎么辦?
跑出漂亮條帶的秘訣,你學會了嗎?
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